畜牧兽医学报  2017, Vol. 48 Issue (12): 2365-2373. DOI: 10.11843/j.issn.0366-6964.2017.12.016    PDF    
不同猪支原体肺炎活疫苗菌株P46和P97基因序列差异性分析
武昱孜1, 邢宪平1,2, 韦艳娜1, 熊祺琰1, 冯志新1, 邵国青1,3     
1. 江苏省农业科学院兽医研究所 农业部兽用生物制品工程技术重点实验室/国家兽用生物制品工程技术研究中心, 南京 210014;
2. 南京农业大学, 南京 210095;
3. 肉类生产与加工质量安全控制协同创新中心, 南京 210095
摘要:对我国用于生产的3种猪支原体肺炎活疫苗菌株(168株、RM48株、Z株)进行P46和P97R1R2基因序列分析,考察其保守性和差异。提取来源于四家猪支原体肺炎活疫苗生产企业的疫苗株基因组DNA,以其为模板进行PCR扩增、测序;利用DNAStar序列分析软件对测序结果和国际标准株J株、232株、7448株、7422株一起进行比对,分析3种疫苗菌株和4个标准株之间核苷酸及氨基酸差异。结果发现,疫苗株Z株、RM48株、168株的P46基因序列相似性为100%,与J株、232株相似性为99.1%,与7422株、7448株相似性为98.9%。疫苗株RM48株和Z株的P97R1R2基因序列相似性为100%;而与疫苗株168株相似性为97.5%;三个疫苗株与J株、232株、7448株、7422株的P97R1R2基因相似性仅为90.1%~93.6%,差异主要发生在R1区重复序列的次数上。本研究为临床猪支原体肺炎活疫苗菌株的检测及不同菌株之间的差异鉴定研究奠定了基础。
关键词猪支原体肺炎    猪肺炎支原体    疫苗株    P46基因    P97基因    
Comparison of Nucleotide and Deduced Amino Acid Sequences of P46 and P97 for the Different Live Vaccine Strains of Mycoplasmal Pneumonia of Swine
WU Yu-zi1, XING Xian-ping1,2, WEI Yan-na1, XIONG Qi-yan1, FENG Zhi-xin1, SHAO Guo-qing1,3     
1. Key Laboratory of Veterinary Biological Engineering and Technology of Ministry of Agriculture/National Center for Engineering Research of Veterinary Bio-products, Institute of Veterinary Medicine, Jiangsu Academy of Agricultural Sciences, Nanjing 210014, China;
2. Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China;
3. Jiangsu Collaborative Innovation Center for Meat Production, Processing and Quality Control, Nanjing 210095, China
Abstract: This experiment was conducted to study the conservation and variation of P46 gene and P97R1R2 gene of three Mycoplasmal pneumonia of swine vaccine strains, e.g.168, RM48 and Z, from domestic production. The DNA of the four vaccine manufacturer products were extracted. The target gene fragments amplified by PCR were sequenced. And the nucleotides sequence and the deduced amino acids sequences were analyzed by DNAStar software, which compared with four international standard strains.The attenuated vaccine strain 168 showed 100% homology of P46 nucleotides sequence with vaccine strain Z and RM48, while 99.1% of that with strain J and 232, 98.9% of that with strain 7422 and 7448. As for P97R1R2 gene, strain Z and RM48 showed completely same identity, and 97.5% of identity with strain 168. The homology among vaccine strains, strain J, 232, 7448 and strain 7422 was lower, only from 90.1% to 93.6%. The major differences of the vaccine strains occurred in the repeat numbers of P97R1 amino acid sequence, which is benefit for differentiation of the attenuated vaccine strains.
Key words: Mycoplasmal pneumonia of swine     Mycoplasma hyopneumoniae     vaccine strain     P46 gene     P97 gene    

猪肺炎支原体(Mycoplasma hyopneumoniaeM. hyopneumoniae)是引起猪支原体肺炎(mycoplasma pneumoniae of swine,MPS)的主要病原,也是猪呼吸道综合征(porcine respiratory disease complex,PRDC)的主要原发性病原之一[1-2]

猪群在感染M. hyopneumoniae后,很容易继发感染其他病原,发生猪呼吸综合征,为猪病诊断和预防控制增加了难度[3-4]。疫苗免疫是防控该病的主要手段,目前我国市场化的猪支原体肺炎活疫苗株仅有Z株、RM48株、168株,但对于这3种疫苗株暂无区分方法报道。P46蛋白是M. hyopneumoniae的黏附蛋白,主要免疫优势蛋白之一,且与其他支原体无交叉反应,常作为M. hyopneumoniae检测的靶蛋白或靶基因。P97蛋白是M. hyopneumoniae的黏附因子,与病原的感染与致病机制相关,具有很好的免疫原性,P97基因C末端的一部分包含两个不定数量的重复区域R1和R2。本研究拟测定各疫苗菌株的P46基因和P97R1R2基因序列,并进行核苷酸与氨基酸同源性分析,为不同疫苗株区别鉴定提供基础。

1 材料与方法 1.1 试验用的疫苗种类

168株:来源于南京天邦生物科技有限公司猪支原体肺炎活疫苗(168株)——支必宁。

RM48株:分别来源于浙江诺倍威生物技术有限公司的猪支原体肺炎活疫苗(RM48株)——喘净威(RM48-NB)、山东绿都制药有限公司的猪支原体肺炎活疫苗(RM48株)(RM48-LD)。

Z株:来源于吉林正业生物制品股份有限公司猪支原体肺炎活疫苗(Z株)。

J株:GenBank登录号为NC_007295.1;232株:GenBank登录号为NC_006360;7448株:GenBank登录号为NC_007332.1;7422株:GenBank登录号为:NC_021831.1。

1.2 主要试剂及仪器

柱式细菌DNAout试剂盒、胶回收试剂盒购自北京天恩泽基因科技有限公司;EX-Taq酶、pMD18-T载体购自TaKaRa公司;AceQ qPCR probe master mix、T4 DNA Ligase、BL21(DE3)化学感受态细胞、DL2000 DNA marker购自南京诺唯赞生物科技有限公司。

1.3 引物合成

根据GenBank中M. hyopneumoniae J株序列(登录号:NC_007295.1),分别设计P46、P97引物,由金斯瑞基因合成。

1.4 疫苗株基因组DNA提取

3种疫苗株按照柱式细菌DNAout试剂盒说明书提取DNA。

1.5 PCR扩增

以提取的基因组DNA为模板,P1、P2、P3、P4为引物,引物序列见表 1,PCR扩增P46基因,反应条件:94 ℃ 5 min;98 ℃ 1 s,50 ℃ 1 min,72 ℃ 1.5 min,共32个循环;72 ℃ 10 min。扩增P97R1R2基因,94 ℃ 4 min;98 ℃ 1 s,50 ℃ 50 s,72 ℃ 50 s,共32个循环;72 ℃ 10 min。PCR扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。PCR产物纯化采用胶回收试剂盒。

表 1 引物序列 Table 1 The primers
1.6 PCR产物的克隆与鉴定

按照pMD18-T试剂盒将回收产物连接入pMD18-T载体,BL21(DE3)化学感受态细胞转化后提质粒,PCR鉴定后测序。

1.7 目的基因的序列分析

将阳性质粒送金斯瑞公司测序,比对四种疫苗的P46、P97R1R2基因序列,采用DNAStar5.0序列分析软件进行序列分析。

2 结果 2.1 P46基因、P97R1R2基因PCR扩增

所有疫苗株P46基因、P97R1R2基因序列分析,PCR产物经琼脂糖凝胶电泳,均可见约1 153或685 bp的片段,与预期分子大小一致,见图 1

M. DL2000 DNA相对分子质量标准; 1.阴性对照;2. 168株;3. RM48-NB株;4. RM48-LD株;5. Z株 M. DL2000 DNA marker; 1. Negative control; 2.168 strain; 3. RM48-NB strain; 4. RM48-LD strain; 5. Z strain 图 1 P46基因、P97R1R2基因PCR扩增 Figure 1 Amplification of P46 gene and P97R1R2 gene by PCR
2.2 P46基因的核苷酸和氨基酸序列分析

对3种疫苗株的克隆产物进行序列测定,所测结果均为P46基因片段,应用DNAStar软件MegAlign程序对国际标准株J株、232株、7448株、7422株一起进行比对,发现168株、RM48-NB株、RM48-LD株、Z株的P46基因序列相似性为100%,与另外4株经典株的相似性也高达98.9%~99.1%。氨基酸序列比对发现,8株菌株间氨基酸序列中有4处突变,主要发生在第175位、220位、229位和第267位。其中,在175位,7422株是赖氨酸(Lys,K),其他菌株均编码天冬酰胺(Asn,N);在220位,3种活疫苗菌株是谷氨酸(Glu,E),而J株、232株和7422株是谷氨酰胺(Gln,Q),7448株是甘氨酸(Gly,G);第229位,3种活疫苗菌株是天冬氨酸(Asp,D),而J株、232株、7422株是谷氨酸(Glu,E);第267位,7448株和7422株是异亮氨酸(Ile,I),J株、232株和疫苗菌株是缬氨酸(Val,V)。

2.3 P97R1R2基因的核苷酸和氨基酸序列分析

对3种疫苗株P97R1R2基因的克隆产物进行序列测定,并且和国际标准株J株、232株、7448株、7422株一起进行比对,应用DNAStar软件MegAlign程序分析其序列,发现RM48株和Z株的P97R1R2基因序列相似性为100%;与168株相似性为97.5%;而3种疫苗株与其他4株经典株相比,相似性相对较低,仅为90.1%~93.6%,遗传进化关系相对也较远。

进一步对8个菌株P97R1R2基因的氨基酸序列进行分析,其差异主要表现在R1、R2重复区的个数上。从P97的R1氨基酸重复序列分析(图 2),RM48株、Z株的重复序列各为17次(其中,AAKPE重复次数为9次,AAKPV重复次数为8次);168株重复序列为11次(其中,AAKPE重复次数为5次,AAKPV重复次数为6次);J株重复序列为9次(其中,AAKPE重复次数为4次,AAKPV重复次数为4次,TTKPV重复次数为1次);232株重复序列为15次(其中,AAKPE重复次数为8次,AAKPV重复次数为6次,TTKPV重复次数为1次);7422株重复序列为15次(其中,AAKPE重复次数为5次,AAKPV重复次数为1次,TTKPV重复次数为1次,TAKPV重复次数为3次);7448株重复序列为10次(其中,AAKPE重复次数为3次,AAKPV重复次数为7次)。

P97的R2区方面(图 2),RM48株、Z株、168株的重复序列各为3次(其中,GSSNQGKKGE重复1次,GTPNQGKKAE重复1次,GAPSQGKKAE重复1次);J株的重复序列为5次(其中,GSPNQGKKAE重复1次,GAPNQGKKAE重复2次,GAPSQGKKAE重复2次);232株的重复序列为4次(其中,GSSNQGKKGE重复1次,GTPNQGKKAE重复2次,GAPNQGKKAE重复1次);7448株、7422株的重复序列各为4次(其中,GSSNQGKKGE重复1次,GAPNQGKKAE重复2次,GAPSQGKKAE重复1次)。

图 2 8个样本P97R1R2蛋白氨基酸序列比较 Figure 2 Comparison of the anino acid sequence of P97R1R2 protein from 8 samples
3 讨论

疫苗免疫是猪支原体肺炎防控的主要手段,我国成功研制了猪支原体肺炎活疫苗,并实现了产业化推广应用,从2010年的1家疫苗公司到2017年的9家疫苗公司生产,呈现了井喷式的发展,给临床上猪气喘病防控带来极大的利好。目前在我国市场上推广的猪支原体肺炎活疫苗菌株主要有三株,分别是中国兽医药品监察所研制的Z株和RM48株、以及由江苏省农业科学院研制的168株。但目前尚无对不同活疫苗菌株区别鉴定的方法报道。国内外对M. hyopneumoniae分型方法有很多,通过P97 R1R2区的重复序列不同比较各菌株间差异是一种简单的分型方法,还有其他很多种基因的分型方法和鉴定方法,比如,AFLP、RAPD、RFLP、PFGE等,但是这些方法操作复杂,结果不易分析,准确性有待提高,不适用于临床;而且全球基因分型方法没有完全一致的标准。本研究选择P46和P97基因作为靶基因,对我国市场上目前所有的猪支原体肺炎活疫苗菌株进行鉴定并区别,将P46和P97基因的保守性和特异性结合起来应用于疫苗生产鉴定,对于保持其生物学特征,保证疫苗产品质量及生物安全具有十分重要的意义。

M. hyopneumoniae膜表面的黏附蛋白变异很频繁[5]。自然界的M. hyopneumoniae可以自发的使其表面的膜蛋白抗原发生大小和结构的变化,在蛋白抗原表面趋近性的形成抗原表位遮蔽物。许多关于M. hyopneumoniae膜蛋白的报道均有不同[6-7], 说明M. hyopneumoniae易发生变异,而P46的基因及编码的蛋白质却具有很高的保守性[8]。P46是M. hyopneumoniae中具有较强的种特异性蛋白质,不存在于其他种类的支原体或其他微生物中,是引起机体早期免疫反应的抗原蛋白,也是M. hyopneumoniae的主要免疫优势蛋白[9],是诊断试剂常用的备选蛋白质,很多研究人员将其作为M. hyopneumoniae检测的靶蛋白或靶基因[10-15],是区别鉴定M. hyopneumoniae和其他种属支原体的一个重要依据,对M. hyopneumoniae的诊断具有重要意义。S. Futo等[10]将重组的P46蛋白用于血清抗体的ELISA检测,敏感、特异,在M. hyopneumoniae感染后的2周内就可以检测到抗体的存在;沈青春等[16]将重组P46表达蛋白作为间接ELISA包被抗原用于检测猪血清中M. hyopneumoniae抗体为抗原,优化建立rP46-ELISA方法;杜改梅等[17]尝试了P97R1、P36、P46、DnaK混合蛋白质作为包被抗原,筛选出特异性好、敏感性高的ELISA用M. hyopneumoniae抗原蛋白,更加准确地监测M. hyopneumoniae的感染或免疫状态。本研究选择P46基因对三种疫苗株进行检测,鉴定疫苗株的准确性,结果发现3个弱毒疫苗株P46基因相似性完全相同,与GenBank中J株、232株、7448株和7422株四株标准株相比,相似性也在98.9%以上。P46基因在人工致弱的疫苗株中仍然高度保守,可作为猪肺炎支原体疫苗株鉴定靶标之一。但所有的活疫苗菌株均在P46基因的第220位和229位氨基酸发生了一致性的突变,在第220位,由谷氨酰胺(Gln,Q)或甘氨酸(Gly,G)突变为谷氨酸(Glu,E);在第229位,由谷氨酸(Glu,E)突变为天冬氨酸(Asp,D)。魏晶晶等[18]在对其他猪肺炎支原体菌株基因比对分析时,也在相同的位点发现了突变的现象。而覃青松等[19]、李莹莹等[20]通过软件分析得出,这些位点氨基酸的变化并不影响P46蛋白的氨基酸二级结构(α-螺旋、β-折叠、β-转角)和亲水性,只有该氨基酸所在表位的抗原性发生了一些小差异,而不影响抗原表位数量的变化,整个序列包含30个抗原表位。熊丁杰等[21]研究M. hyopneumoniae MY-99株,也得出了同样的结论。3个人工致弱的疫苗株在P46基因的第220位和229位发生的一致性突变,是否与长期在培养基中传代并适应生长有关,或许与毒力下降有关,尚难作出定论。

P97编码区C端的R1区是P97的抗原决定簇区,随机分布在M. hyopneumoniae细胞膜外表面,最早被证明具有黏附作用的黏附因子,是纤毛的结合位点(AAKPV/E)[22-24],参与纤毛的黏附[25-26],会引起感染猪产生免疫应答[27-29],当它黏附在宿主细胞上时,会造成呼吸道纤毛的损伤,将有利于其他病原体的入侵[30];R2区不能黏附纤毛[31-32]。通过对P97蛋白的体外研究发现了P97的N和C端都能够黏附肝磷脂,C末端的R1和R2两个重复单元对肝磷脂的黏附都是不可缺少的[23]。当猪感染M. hyopneumoniae后,最早产生针对P97的IgM和IgG,比针对其他抗原早30~60 d[33],所以也将P97蛋白作为M. hyopneumoniae早期感染的致病机制中的一环进行研究。P97R1蛋白可诱发猪呼吸道产生特异性IgA抗体[34],逯晓敏等[35]初步建立M. hyopneumoniae IgA间接ELISA方法,用于临床监测;Z. X. Feng等[36]用纯化的P97R1为抗原建立的M. hyopneumoniae SIgA-ELISA诊断方法能够检测出鼻拭子中的M. hyopneumoniae IgA,该方法的特异性、敏感性和准确性可以达到94%以上。

不同菌株的差别主要集中在P97R1R2片段重复序列的差别,可以作为区分不同M. hyopneumoniae菌株的一个标准[37-38]。作为一个主要毒力因子,P97蛋白用于M. hyopneumoniae早期检测、强弱毒株黏附力的分析以及疫苗的防治等。有报道称,R1区重复序列的差异性可能与黏附能力、毒力相关。M. hyopneumoniae不同菌株型间黏附因子序列的比较,发现R1区的变异性最大,重复基元范围从8~15个数量不等,而R2区的重复基元一般保持在3~4个之间。有文献报道重复单元的个数与猪肺炎支原体的黏附能力相关。F. C. Minion等[22]发现P97蛋白C末端的R1重复区是与纤毛结合部位,当R1区域重复单元至少8个,该杂合蛋白才能与纤毛结合,被抗体识别至少需要3个以上的重复序列;T. Hsu等[32]同样发现当P97R1区域的重复次数在8以上时,该杂合蛋白才能与纤毛结合,而且重复单元数越高,黏附能力越强。另外也有研究表明,P97R1重复数的多少与强弱毒株的区分有一定联系,可以作为M. hyopneumoniae分型和鉴定的一个标准[39-40]。丁芳等[41]对232株、中国兽医药品监察所保存的R659株和F19株的P97R1比较发现,重复序列数分别为15次、17次、11次,因此推测R1重复序列的差异可能就是导致R659弱毒株致病力下降的原因。但本研究发现,三个人工致弱的疫苗株R1重复区分别为11次和17次,而强毒株232株R1重复序列个数处于中间,为15次。这又说明M. hyopneumoniae毒力的强弱不一定与R1区重复次数完全相关。疫苗株中,Z株是由M. hyopneumoniae兔化弱毒株接种鸡胚,繁殖并收获卵黄囊制成的弱毒菌株;将兔化弱毒株适应培养基,并在培养基上连传48代,在使其更加适应培养基,提高活菌数的同时,进一步减弱了毒力,研究出了培养基弱毒活疫苗RM48株[41-46]。从P46与P97R1R2基因的遗传分析看,Z株与RM48株的相似性达到100%,这可能与相同的遗传来源相关。而168株是江苏省农业科学院兽医研究所于1979年在甘肃省分离,经3次克隆化培养,无细胞培养基中致弱培养至322代次以上,形成有免疫原性的弱毒菌株[47]。相比Z株与RM48株,虽然168株的P46基因的相似性达100%,但在P97R1R2基因的重复区个数方面存在差异,这种差异与菌株之间的黏附力或毒力是否存在关系,本研究尚无法得出结论;但利用这种差异,可以方便地区别各疫苗菌株。

M. hyopneumoniae基因组较大,对其主种子批进行全基因组测序,耗时、费用高,但选择保守性高的P46和存在定向突变的P97基因区段测序可有效避免上述诸多不利因素,同时也防止主种子批、主种子库发生变异,以便对疫苗生产用种子进行质量控制。

4 结论

选择P46和P97基因作为靶基因,对我国市场上3种猪支原体肺炎活疫苗菌株(168株、RM48株、Z株)进行鉴定并区别,利用DNAStar序列分析软件对测序结果和国际标准株J株、232株、7448株、7422株一起进行比对,结果发现,疫苗株Z株、RM48株、168株的P46基因序列相似性为100%,与J株、232株相似性为99.1%,与7422株、7448株相似性为98.9%。疫苗株RM48株和Z株的P97R1R2基因序列相似性为100%;而与疫苗株168株相似性为97.5%;3个疫苗株与J株、232株、7448株、7422株的P97R1R2基因相似性仅为90.1%~93.6%,差异主要发生在R1区重复序列的次数上。

参考文献
[1] 陈溥言. 兽医传染病学[M]. 5版. 北京: 中国农业出版社, 2006: 254.
CHEN P Y. Veterinary lemology[M]. 5th ed. Beijing: China Agriculture Press, 2006: 254. (in Chinese)
[2] KUHNERT P, OVERESCH G. Molecular epidemiology of Mycoplasma hyopneumoniae from outbreaks of enzootic pneumonia in domestic pig and the role of wild boar[J]. Vet Microbiol, 2014, 174(1-2): 261–266. DOI: 10.1016/j.vetmic.2014.08.022
[3] DEBLANC C, ROBERT F, PINARD T, et al. Pre-infection of pigs with Mycoplasma hyopneumoniae induces oxidative stress that influences outcomes of a subsequent infection with a swine influenza virus of H1N1 subtype[J]. Vet Microbiol, 2013, 162(2-4): 643–651. DOI: 10.1016/j.vetmic.2012.11.028
[4] KUKUSHKIN S, OKOVYTAYA T. Seroprevalence of Lawsonia intracellularis, Mycoplasma hyopneumoniae and PCV2 in commercial pig farms in Russia[J]. Vet Rec, 2012, 171(5): 126.
[5] ESCOBAR J, VAN ALSTINE W G, BAKER D H, et al. Growth performance and whole-body composition of pigs experimentally infected with Mycoplasma hyopneumoniae[J]. J Anim Sci, 2002, 80(2): 384–391. DOI: 10.2527/2002.802384x
[6] 熊焰, 孙霞, 苟琳. 猪肺炎支原体MY-99株膜蛋白SDS-PAGE分析及免疫原性研究[J]. 畜牧兽医学报, 2004, 35(1): 74–78.
XIONG Y, SUN X, GOU L. Study on SDS-PAGE and immunogenicity of Mycoplasma hyopneumoniae strain MY-99 membrane protein[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2004, 35(1): 74–78. (in Chinese)
[7] ASSUNÇÃO P, DE LA FE C, RAMÍREZ A S, et al. Protein and antigenic variability among Mycoplasma hyopneumoniae strains by SDS-PAGE and immunoblot[J]. Vet Res Commun, 2005, 29(7): 563–574. DOI: 10.1007/s11259-005-3083-5
[8] 覃青松, 宁宜宝, 沈青春. 猪肺炎支原体膜蛋白P46基因在大肠杆菌中的表达[J]. 中国预防兽医学报, 2005, 27(2): 94–97.
QIN Q S, NING Y B, SHEN Q C. Expression of membrane protein P46 of Mycoplasma hyopneumoniaes[J]. Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine, 2005, 27(2): 94–97. (in Chinese)
[9] 张悦, 刘茂军, 邵国青. 猪肺炎支原体主要抗原蛋白的研究进展[J]. 中国农学通报, 2013, 29(2): 16–22.
ZHANG Y, LIU M J, SHAO G Q. Advancement of major immunogenicity proteins on Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2013, 29(2): 16–22. DOI: 10.11924/j.issn.1000-6850.2012-2419 (in Chinese)
[10] FUTO S, SETO Y, OKADA M, et al. Recombinant 46-kilodalton surface antigen (P46) of Mycoplasma hyopneumoniae expressed in Escherichia coli can be used for early specific diagnosis of mycoplasmal pneumonia of swine by enzyme-linked immunosorbent assay[J]. J Clin Microbiol, 1995, 33(3): 680–683.
[11] BOUH K C S, SHARECK F, DEA S. Monoclonal antibodies to Escherichia coli-expressed P46 and P65 membranous proteins for specific immunodetection of Mycoplasma hyopneumoniae in lungs of infected pigs[J]. Clin Vaccine Immunol, 2003, 10(3): 459–468. DOI: 10.1128/CDLI.10.3.459-468.2003
[12] FREYTAG L C, CLEMENTS J D. Mucosal adjuvants[J]. Vaccine, 2005, 23(15): 1804–1813. DOI: 10.1016/j.vaccine.2004.11.010
[13] OKADA M, ASAI T, FUTO S, et al. Serological diagnosis of enzootic pneumonia of swine by a double-sandwich enzyme-linked immunosorbent assay using a monoclonal antibody and recombinant antigen (P46) of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Vet Microbiol, 2005, 105(3-4): 251–259. DOI: 10.1016/j.vetmic.2004.11.006
[14] FUTO S, SETO Y, MITSUSE S, et al. Molecular cloning of a 46-kilodalton surface antigen (P46) gene from Mycoplasma hyopneumoniae:direct evidence of CGG codon usage for arginine[J]. J Bacteriol, 1995, 177(7): 1915–1917. DOI: 10.1128/jb.177.7.1915-1917.1995
[15] CARON J, OUARDANI M, DEA S. Diagnosis and differentiation of Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma hyorhinis infections in pigs by PCR amplification of the p36 and p46 genes[J]. J Clin Microbiol, 2000, 38(4): 1390–1396.
[16] 沈青春, 王芳, 韩明远, 等. 猪肺炎支原体P46基因的原核表达与间接ELISA方法的建立[J]. 畜牧兽医学报, 2012, 43(3): 431–437.
SHEN Q C, WANG F, HAN M Y, et al. Expression of P46 protein of Mycoplasma hyopneumoniae in Escherichia coli and used for indirect ELISA[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2012, 43(3): 431–437. (in Chinese)
[17] 杜改梅, 刘茂军, 韦艳娜, 等. 猪肺炎支原体不同蛋白抗原检测疫苗诱导IgG产生规律的研究[J]. 畜牧兽医学报, 2013, 44(6): 925–930.
DU G M, LIU M J, WEI Y N, et al. Detection of IgG antibodies regularity induced by vaccine using different Mycoplasma hyopneumoniae antigen proteins[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2013, 44(6): 925–930. DOI: 10.11843/j.issn.0366-6964.2013.06.014 (in Chinese)
[18] 魏晶晶, 李聪研, 孙亚波, 等. 猪肺炎支原体S株的分离与鉴定[J]. 中国兽药杂志, 2016, 50(2): 15–21.
WEI J J, LI C Y, SUN Y B, et al. Isolation and identification of strain S of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Chinese Journal of Veterinary Drug, 2016, 50(2): 15–21. (in Chinese)
[19] 覃青松, 宁宜宝, 沈青春. 猪肺炎支原体表面蛋白P46基因的克隆与序列比较[J]. 中国预防兽医学报, 2004, 26(4): 266–269.
QIN Q S, NING Y B, SHEN Q C. Cloning and sequencing of surface protein P46 gene of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine, 2004, 26(4): 266–269. (in Chinese)
[20] 李莹莹, 赵武, 李斌, 等. 广西陆川猪肺炎支原体P46基因克隆及序列分析[J]. 中国畜牧兽医, 2014, 41(2): 1–5.
LI Y Y, ZHAO W, LI B, et al. Cloning and sequence analysis of P46 gene of Mycoplasma hyopneumoniae in Guangxi Luchuan pig[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2014, 41(2): 1–5. (in Chinese)
[21] 熊丁杰, 熊焰, 蔺露. 猪肺炎支原体MY-99株P46基因的序列分析[J]. 中国畜牧兽医, 2010, 37(4): 103–105.
XIONG D J, XIONG Y, LIN L. Sequential analysis of surface protein P46 gene of Mycoplasma hyopneumoniae wild strain MY-99[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2010, 37(4): 103–105. (in Chinese)
[22] MINION F C, ADAMS C, HSU T. R1 region of P97 mediates adherence of Mycoplasma hyopneumoniae to swine cilia[J]. Infect Immun, 2000, 68(5): 3056–3060. DOI: 10.1128/IAI.68.5.3056-3060.2000
[23] JENKINS C, WILTON J L, MINION F C, et al. Two domains within the Mycoplasma hyopneumoniae cilium adhesin bind heparin[J]. Infect Immun, 2006, 74(1): 481–487. DOI: 10.1128/IAI.74.1.481-487.2006
[24] 贾丽艳, 高玉花, 张映. 猪肺炎支原体地方毒株P97-R1基因序列分析及原核表达[J]. 中国农学通报, 2012, 28(20): 77–82.
JIA L Y, GAO Y H, ZHANG Y. Sequence analysis and prokaryotic expression on P97-R1 gene of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2012, 28(20): 77–82. (in Chinese)
[25] ZHANG Q, YOUNG T F, ROSS R F. Identification and characterization of a Mycoplasma hyopneumoniae adhesin[J]. Infect Immun, 1995, 63(3): 1013–1019.
[26] 张旭, 冯志新, 武昱孜, 等. 猪肺炎支原体黏附猪肾细胞模型建立及体外黏附特性研究[J]. 畜牧兽医学报, 2013, 44(5): 772–777.
ZHANG X, FENG Z X, WU Y Z, et al. Establishment of Mycoplasma hyopneumoniae adhesion on PK15 model and the adhesion ability in vitro[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2013, 44(5): 772–777. (in Chinese)
[27] CHEN A Y, FRY S R, FORBES-FAULKNER J, et al. Evaluation of the immunogenicity of the P97R1 adhesin of Mycoplasma hyopneumoniae as a mucosal vaccine in mice[J]. J Med Microbiol, 2006, 55(7): 923–929. DOI: 10.1099/jmm.0.46088-0
[28] THACKER E L, THACKER B J, KUHN M, et al. Evaluation of local and systemic immune responses induced by intramuscular injection of a Mycoplasma hyopneumoniae bacterin to pigs[J]. Am J Vet Res, 2000, 61(11): 1384–1389. DOI: 10.2460/ajvr.2000.61.issue-11
[29] YOUNG T F, THACKER E L, ERICKSON B Z, et al. A tissue culture system to study respiratory ciliary epithelial adherence of selected swine mycoplasmas[J]. Vet Microbiol, 2000, 71(3-4): 269–279. DOI: 10.1016/S0378-1135(99)00176-5
[30] DEBEY M C, ROSS R F. Ciliostasis and loss of cilia induced by Mycoplasma hyopneumoniae in porcine tracheal organ cultures[J]. Infect Immun, 1994, 62(12): 5312–5318.
[31] HSU T, ARTIUSHIN S, MINION F C. Cloning and functional analysis of the P97 swine cilium adhesin gene of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. J Bacteriol, 1997, 179(4): 1317–1323. DOI: 10.1128/jb.179.4.1317-1323.1997
[32] HSU T, MINION F C. Identification of the cilium binding epitope of the Mycoplasma hyopneumoniae P97 adhesin[J]. Infect Immun, 1998, 66(10): 4762–4766.
[33] YOUNG T F, CHIANG Y W, ROSS R F. Evaluation of local and systemic humoral immune response to Mycoplasma hyopneumoniae[C]//Proceedings of the 11th Congress of the International Pig Veterinary Society. Lausanne, Switzerland:International Pig Veterinary Society, 1990.
[34] 姚景霆, 冯志新, 刘茂军, 等. 猪肺炎支原体感染早期诱导猪呼吸道产生多种特异性IgA抗体分泌规律研究[J]. 畜牧兽医学报, 2013, 44(5): 767–771.
YAO J T, FENG Z X, LIU M J, et al. Research on the initial secretive feature of specific IgA antibody in respiratory tract of pigs infected with Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2013, 44(5): 767–771. (in Chinese)
[35] 逯晓敏, 冯志新, 刘茂军, 等. 抗猪肺炎支原体IgA间接ELISA检测方法的建立[J]. 畜牧兽医学报, 2009, 40(10): 1569–1574.
LU X M, FENG Z X, LIU M J, et al. Establishment and application of indirect ELISA for Mycoplasma hyopneumoniae IgA detection[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2009, 40(10): 1569–1574. DOI: 10.3321/j.issn:0366-6964.2009.10.024 (in Chinese)
[36] FENG Z X, SHAO G Q, LIU M J, et al. Development and validation of a SIgA-ELISA for the detection of Mycoplasma hyopneumoniae infection[J]. Vet Microbiol, 2010, 143(2-4): 410–416. DOI: 10.1016/j.vetmic.2009.11.038
[37] DEUTSCHER A T, JENKINS C, MINION F C, et al. Repeat regions R1 and R2 in the P97 paralogue Mhp271 of Mycoplasma hyopneumoniae bind heparin, fibronectin and porcine cilia[J]. Mol Microbiol, 2010, 78(2): 444–458. DOI: 10.1111/mmi.2010.78.issue-2
[38] HSU T, MINION F C. Molecular analysis of the P97 cilium adhesin operon of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Gene, 1998, 214(1-2): 13–23. DOI: 10.1016/S0378-1119(98)00247-9
[39] STAKENBORG T, VICCA J, MAES D, et al. Comparison of molecular techniques for the typing of Mycoplasma hyopneumoniae isolates[J]. J Microbiol Methods, 2006, 66(2): 263–275. DOI: 10.1016/j.mimet.2005.12.002
[40] VRANCKX K, MAES D, DEL POZO SACRISTÁN R, et al. A longitudinal study of the diversity and dynamics of Mycoplasma hyopneumoniae infections in pig herds[J]. Vet Microbiol, 2012, 156(3-4): 315–321. DOI: 10.1016/j.vetmic.2011.11.007
[41] 丁芳, 宁宜宝. Mhp强弱毒株P97基因的克隆与序列测定[J]. 畜牧兽医学报, 2004, 35(6): 698–701.
DING F, NING Y B. Molecular cloning and comparison between P97 gene of virulent and attenuated strains of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2004, 35(6): 698–701. (in Chinese)
[42] 宁宜宝, 沈青春, 李继庚, 等. 猪喘气病活疫苗及其生产方法: 中国, CN1928076[P]. 2007-09-28.
NING Y B, SHEN Q C, LI J G, et al. Live vaccine for mycoplasma pneumonia of swine and production method thereof:China, CN1928076[P]. 2007-09-28. (in Chinese)
[43] 郑鹏. 猪支原体肺炎活疫苗RM48株气雾免疫技术的研究[D]. 泰安: 山东农业大学, 2016.
ZHENG P. Research on live vaccine RM48 of MPS using by aerosol immunization technique[D]. Tai'an:Shandong Agricultural University, 2016. (in Chinese)
[44] 覃青松. 猪肺炎支原体P46基因在大肠杆菌中的克隆、表达与ELISA方法研究[D]. 北京: 中国兽医药品监察所, 2004.
QIN Q S. Clone, expression and ELISA method of P46 Protein of Mycoplasma hyopneumoniae in Escherichia coli[D]. Beijing:China Institute of Veterinary Drug Control, 2004. (in Chinese) http://d.wanfangdata.com.cn/Thesis/Y609238
[45] 王桂敏, 丁庆猷, 李继庚, 等. 猪喘气病弱毒疫苗的研究——鸡胚苗的研制[J]. 中国农业科学, 1990, 23(1): 1–8.
WANG G M, DING Q Y, LI J G, et al. Studies on an attenuated vaccine against mycoplasmal pneumonia of swine——development of a chicken-embryo vaccine[J]. Scientia Agricultura Sinica, 1990, 23(1): 1–8. (in Chinese)
[46] 丁庆猷, 王桂敏, 李继庚, 等. 猪喘气病弱毒苗的研究:2.冻干大兔苗的研制和应用[J]. 中国兽医杂志, 1989, 15(7): 2–4.
DING Q Y, WANG G M, LI J G, et al. Studies on an attenuated vaccine against mycoplasmal pneumonia of swine:development and application of rabbit freeze-dried vaccines[J]. Chinese Journal of Veterinary Medicine, 1989, 15(7): 2–4. (in Chinese)
[47] 邵国青, 金洪效, 毛洪先, 等. 猪肺炎支原体克隆致弱株: 中国, CN1244580A[P]. 2000-02-16.
SHAO G Q, JIN H X, MAO H X, et al. Cloned weakening strain of swine pneumonia mycoplasma:China, CN1244580A[P]. 2000-02-16. (in Chinese)